蔗糖酶(sucrase)試劑盒說明書
微量法100管/48樣
注 意 :正式測定前務(wù)必取2-3個預(yù)期差異較大的樣本做預(yù)測定
測定意義:
蔗糖酶(EC 3.2.1.26)是碳水化合物消化吸收的關(guān)鍵酶之一,能夠水解蔗糖變成相應(yīng)的單糖而被機體吸收。
測定原理:
本試劑盒采用3.5-二硝基水楊酸法測定蔗糖酶催化產(chǎn)生的還原糖的含量,由此可得出蔗糖酶水解速度。其原理是3.5-二硝基水楊酸與還原糖共熱被還原成棕紅色的氨基化合物,在一定范圍內(nèi)還原糖的量和反應(yīng)液的顏色深度成正比。此法操作簡便、迅速、雜質(zhì)干擾較小。
所需的儀器和用品:
可見分光光度計/酶標(biāo)儀、沸水浴、移液器、微量石英比色皿/96孔板、研缽、冰和蒸餾水。
試劑的組成和配制:
提取液:液體100mL×1瓶,4℃保存;
試劑一:液體2mL×1瓶,4℃保存;
試劑二:粉劑×1支 ,4℃保存,用時加入1mL蒸餾水充分溶解待用;用不完的試劑4℃保存;
試劑三:液體3mL×1瓶,常溫保存;
樣品測定的準(zhǔn)備:
按照組織質(zhì)量(g):提取液體積(mL)為1:5~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液),進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。
測定步驟:
1、 分光光度計或酶標(biāo)儀預(yù)熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至520nm,蒸餾水調(diào)零。
2、 樣本測定,(在EP管中依次加入下列試劑):
試劑名稱(μL) | 對照管 | 測定管 |
試劑一 | 15 | 15 |
蒸餾水 | 15 | |
樣本 | 30 | 30 |
試劑二 | 15 |
置于25℃準(zhǔn)確水浴10min
試劑三 | 30 | 30 |
混勻, 95℃水浴5min左右(蓋緊,防止水分散失),冷卻至室溫
蒸餾水 | 210 | 210 |
混勻,取200μL至微量石英比色皿或96孔板中測定各管520nm吸光值,ΔA=A測定-A對照,每個測定管需設(shè)一個對照管。
蔗糖酶活力計算:
a. 用微量石英比色皿測定的計算公式如下
1、標(biāo)準(zhǔn)條件下測定的回歸方程為y = 0.1296x -0.12;x為標(biāo)準(zhǔn)品濃度(mg/mL),y為吸光值。
2、按照蛋白濃度計算
單位定義:每mg組織蛋白每分鐘催化水解1μg蔗糖定義為一個酶活力單位。
蔗糖酶活力(μg/min/mg prot)=[1000×(ΔA+0.12)÷0.1296×V1]÷(V1×Cpr)÷T=771×(ΔA +0.12)÷Cpr。
3、按樣本鮮重計算
單位定義:每g組織每分鐘催化水解1μg蔗糖定義為一個酶活力單位。
蔗糖酶活力(μg/min/g鮮重)=[1000×(ΔA+0.12)÷0.1296×V1]÷(W×V1÷V2)÷T=771×(ΔA +0.12) ÷W。
1000:1mg/mL=1000μg/mL;V1:加入反應(yīng)體系中樣本體積,0.03mL;V2:加入提取液體積,1mL;T:反應(yīng)時間,10min; Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;W:樣本鮮重,g。
b. 用96孔板測定的計算公式如下
1、標(biāo)準(zhǔn)條件下測定的回歸方程為y = 0.0648x -0.12;x為標(biāo)準(zhǔn)品濃度(mg/mL),y為吸光值。
2、按照蛋白濃度計算
單位定義:每mg組織蛋白每分鐘催化水解1μg 蔗糖定義為一個酶活力單位。
蔗糖酶活力(μg/min/mg prot)=[1000×(ΔA+0.12)÷0.0648×V1]÷(V1×Cpr)÷T=1542×(ΔA +0.12)÷Cpr。
3、按樣本鮮重計算
單位的定義:每g組織每分鐘催化水解1μg 蔗糖定義為一個酶活力單位。
蔗糖酶活力(μg/min/g鮮重)=[1000×(ΔA+0.12)÷0.0648×V1]÷(W×V1÷V2)÷T=1543×(ΔA +0.12) ÷W。
1000:1mg/mL=1000μg/mL;V1:加入反應(yīng)體系中樣本體積,0.03mL;V2:加入提取液體積,1mL;T:反應(yīng)時間,10min; Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;W:樣本鮮重,g。
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