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糖原磷酸化酶a(Glycogen phosphorylase a,GPa)試劑盒說明書

發(fā)布時間:2023/10/27      點擊次數:254

糖原磷酸化酶aGlycogen phosphorylase a,GPa)試劑盒說明書

                                            微量法100/96

 

   意 :正式測定前務必取2-3個預期差異較大的樣本做預測定

測定意義:

糖原磷酸化酶(Glycogen phosphorylaseGP,EC 2.4.1.1))是糖原分解代謝的關鍵酶,使糖原分子從非還原端逐個斷開α-1,4-糖苷鍵移去葡萄糖基,釋放1-磷酸葡萄糖,直至臨近糖原分子α-1,6-糖苷鍵分支點前4個葡萄糖基處。GP分為有活性的糖原磷酸化酶aGPa)和無活性的糖原磷酸化酶bGPb)兩種形式。糖原的分解主要在GPa的催化下進行。

 

測定原理:

未添加激活劑時,GPa催化糖原和無機磷產生葡萄糖殘基生成糖原和1-磷酸葡萄糖,磷酸葡萄糖變位酶和6-磷酸葡萄糖脫氫酶進一步依次催化NADP還原生成NADPH,在340nm下測定NADPH上升速率,即可反映GPa活性。

 

需自備的儀器和用品:

紫外分光光度計/酶標儀、臺式離心機、可調式移液器、微量石英比色皿/96孔板、研缽、冰和蒸餾水。

 

試劑的組成和配制:

提取液:100mL×1瓶,4保存;

試劑一:液體16 mL×1瓶, 4保存;

試劑二:粉劑×1瓶,-20保存;

試劑三:粉劑×1支,-20保存;

試劑四:粉劑×1支, -20保存;

樣本的前處理:

按照組織質量(g):提取液體積(mL)15~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液),進行冰浴勻漿。8000g 4離心10min,取上清,置冰上待測。

 

測定步驟:

1、  分光光度計或酶標儀預熱30min以上,調節(jié)波長至340nm,蒸餾水調零;

2、  工作液的配制:臨用前將試劑二轉移到試劑一中混合溶解待用;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復凍融。

3、  試劑三的配制:臨用前在試劑三管中加入1mL蒸餾水充分溶解待用;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復凍融。

4、   試劑四的配制:臨用前在試劑四管中加入1mL蒸餾水充分溶解待用;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復凍融。

5、   將工作液、試劑三和試劑四置于37預熱5分鐘;

6、   在微量石英比色皿或96孔板中加入10μL樣本、10μL試劑三、10μL試劑四、10μL蒸餾水和160μL工作液,立即混勻,記錄340nm5min后的A110min后的吸光值A2,計算ΔA=A2-A1

 

GPa活性計算:

a.用微量石英比色皿測定的計算公式如下:

1)按樣本蛋白濃度計算

單位定義:每mg組織蛋白每分鐘產生1nmol NADPH定義為一個酶活力單位。

GPanmol/min/mg prot)=[ΔA×V反總÷ε×d×109]÷(V×Cpr) ÷T=643×ΔA÷Cpr

2)按樣本鮮重計算

單位定義:每g組織每分鐘產生1nmol NADPH定義為一個酶活力單位。

GPanmol/min/g 鮮重)=[ΔA×V反總÷ε×d×109]÷(W ×V÷V樣總)÷T=643×ΔA÷W

V反總:反應體系總體積,2×10-4 L;εNADPH摩爾消光系數,6.22×103 L / mol /cm;d:比色皿光徑,1cm;V樣:加入樣本體積,0.01 mL;V樣總:加入提取液體積,1 mL;T:反應時間,5 min;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL;W:樣本質量,g。

 

b.96孔板測定的計算公式如下:

1)按樣本蛋白濃度計算

單位定義:每mg組織蛋白每分鐘產生1nmol NADPH定義為一個酶活力單位。

GPanmol/min/mg prot)=[ΔA×V反總÷ε×d×109]÷(V×Cpr) ÷T=1286×ΔA÷Cpr

2)按樣本鮮重計算

單位定義:每g組織每分鐘產生1nmol NADPH定義為一個酶活力單位。

GPanmol/min/g 鮮重)=[ΔA×V反總÷ε×d×109]÷(W ×V÷V樣總)÷T=1286×ΔA÷W

V反總:反應體系總體積,2×10-4 LεNADPH摩爾消光系數,6.22×103 L / mol /cmd96孔板光徑,0.5cm;V樣:加入樣本體積,0.01 mL;V樣總:加入提取液體積,1 mL;T:反應時間,5 min;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL;W:樣本質量,g。


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